Międzywydziałowe Laboratorium badań in vivo

W ramach programu „Inicjatywa Doskonałości – Uczelnia Badawcza” w Gdańskim Uniwersytecie Medycznym działalność rozpoczyna nowe, międzywydziałowe core facility – Laboratorium badań in vivo.

Jednostka powstała dzięki inicjatywie jednej z koordynatorek zespołu V „In vivo studies on mechanism of disease and therapy” w POB 3 i stanowi efekt współpracy doświadczonych naukowców z:

• Zakładu Anatomii i Neurobiologii,
• Zakładu Chemii Klinicznej,
• Katedry i Zakładu Farmakologii,
• Katedry i Zakładu Biochemii,
• Katedry Biofarmacji i Farmakodynamiki (w tym Zakładu Biofarmacji i Farmakokinetyki, Zakładu Farmakodynamiki).

Nasz potencjał i zakres usług

Z uwagi na interdyscyplinarny charakter jednostki współpraca z Laboratorium Badań in vivo umożliwia zaplanowanie oraz wykonanie specjalistycznych badań in vivo oraz analiz z różnych dziedzin medycyny doświadczalnej podczas jednego projektu badawczego lub badania przedklinicznego.

Jednostka świadczy szeroki zakres usług z obszaru badań in vivo, w tym:

1. Hodowla unikatowych mysich oraz szczurzych modeli eksperymentalnych:

2. Wykonywanie badań eksperymentalnych z zakresu:

• neurobiologii i neuroanatomii doświadczalnej:

• testy behawioralne zwierząt doświadczalnych,
• tworzenie zwierzęcych modeli doświadczalnych udarów mózgowych krwotocznych i niedokrwiennych,
• tworzenie zwierzęcych modeli otyłości/cukrzycy typu 2,
• zastosowanie metody stereologii w badaniach neurologicznych.

• nefrologii doświadczalnej:

• tworzenie zwierzęcych modeli nefrologii doświadczalnej: cukrzycy indukowanej streptazotocyną, hiperangiotensynemii indukowanej dietą o niskiej zawartości jonów sodu, hipercholesterolemii indukowanej dietą o zwiększonej zawartości cholesterolu, model przewlekłego odnerwienia nerek,
• ocena wydalania z moczem elektrolitów, białek i metabolitów z wykorzystaniem klatek metabolicznych,
• dopplerowski pomiar przepływu krwi przez korę i rdzeń nerek,
• ocena filtracji kłębuszkowej w oparciu o klirens radioaktywnej inuliny oraz transdermalny pomiar sygnału fluorescencyjnego z wykorzystanie FITC-sinstryny,
• mikrodializa płynu śródmiąższowego kory nerek,
• miografia tętnic nerkowych,
• pomiar objętości wewnątrz kapilarnej izolowanych kłębuszków nerkowych,
• ocena perystaltyki jelit u szczurów „ex vivo” w różnych sytuacjach klinicznych.

• kardiologii doświadczalnej:

• pomiar parametrów skurczu mięśni gładkich i mięśnia sercowego (mięsień brodawkowaty),
• ocena zmian płucnych naczyniowych i miąższowych w nadciśnieniu płucnym,
• ocena agregacji płytek na materiale ludzkim oraz z modelu cukrzycy u królika spowodowanej streptazotocyną,
• telemetryczny pomiar ciśnienia i częstości pracy serca oraz temperatury wewnętrznej w różnych modelach doświadczalnych jak nadciśnienie płucne, cukrzyca,
• pomiar EKG u zwierząt laboratoryjnych (w warunkach normoksji lub hipoksji),
• pomiar ECHO serca u zwierząt laboratoryjnych,
• pomiar siły mięśniowej zwierząt laboratoryjnych,
• badania funkcji i metabolizmu izolowanych narządów (w układzie perfuzji Langendorffa),
• badanie funkcji i metabolizmu izolowanych mitochondriów,
• badanie preferencji substratowej serca i mięśni szkieletowych zwierzęcych modeli doświadczalnych,
• badania z wykorzystaniem modelu izolowanych przedsionków serca szczura.

• onkologii doświadczalnej:

• chemia indukcyjna (MPA, DMBA) raka piersi u myszy,
• ortotopowy model mysiego raka piersi (wstrzyknięcie komórek raka piersi do poduszki tłuszczowej sutka),
• syngeniczny model mysiego czerniaka (podskórne wstrzyknięcie komórek czerniaka),
• pozyskiwanie pierwotnych kultur komórkowych (mechaniczne/enzymatyczne metody izolacji komórek nowotworowych lub śródbłonka płuc i generowanie pierwotnych kultur komórkowych).

• farmakologii doświadczalnej:

• ocena efektywności środków przeciwbólowych,
• wyznaczanie profili farmakokinetycznych.

3. Wykonywanie ilościowych oznaczeń związków oraz analiz biochemicznych w próbkach biologicznych pochodzenia zwierzęcego:

• analiza składu lipoprotein osocza krwi,
• ocena parametrów biochemicznych osocza i surowicy,
• oznaczenia stężeń związków azotowych (nukleotydy, aminokwasy, metabolity nikotynamidu i ich pochodne).

4. Wsparcie w podstawowych procedurach z zakresu badań in vivo oraz innych metodach badawczych w tym:

• przewlekłe podawanie związków biologicznie czynnych przy użyciu pomp osmotycznych,
• podanie podskórne, dootrzewnowe, dożylne farmaceutyków,
• przyżyciowe pobieranie krwi,
• intubacja i sztuczna wentylacja (kluczowa dla badań metabolizmu),
• nekropsja (eutanazja zwierząt, izolacja narządów i tkanek, analiza stereoskopowa przerzutów),
• przygotowanie tkanek zwierzęcych do badań, histologicznych/immunohistochemicznych oraz analiza preparatów histologicznych i immunohistochemicznych,
• badania izolowanych skrawków tkanek zwierzęcych.

Laboratorium oferuje również pracownikom, doktorantom GUMed oraz jednostkom zewnętrznym możliwość konsultacji w ramach prowadzonych projektów badawczo-rozwojowych oraz przeprowadzanie tematycznych warsztatów praktycznych dla badaczy oraz klinicystów z wykorzystaniem zwierzęcych modeli badawczych (m.in. z dziedziny neurochirurgii czy też mikrochirurgii).

fot. Paweł Sudara/GUMed

Zaplecze metodyczne (152 KB)

Zespół badawczy (243 KB)

Publikacje (355 KB)

Cennik:

Współpraca z laboratorium może mieć charakter usługowy lub niekomercyjny (wspólne projekty naukowo-badawcze, publikacje naukowe).

Pracownie będą wykonywać analizy zgodnie z indywidualnymi zleceniami z dostosowaniem do konkretnych potrzeb kontrahentów. Koszt usługi wyceniany jest indywidualnie.

KONTAKT

dr Marta Tomczyk
kierownik Laboratorium Badań in vivo
Gdański Uniwersytet Medyczny
tel.: 58 349 14 60
marta.tomczyk@gumed.edu.pl